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漲知識|qPCR專場八:細(xì)節(jié)-認(rèn)真的態(tài)度和科學(xué)的精神

2023-10-7  閱讀(172)

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漲知識|qPCR專場八:細(xì)節(jié)-認(rèn)真的態(tài)度和科學(xué)的精神

 


熒光定量PCR是實驗室中出鏡率非常高的一種檢測方法。該方法通過在PCR體系中添加熒光基團(tuán)來記錄DNA產(chǎn)物的累積情況,從而達(dá)到對PCR過程進(jìn)行實時監(jiān)控的目的,并且可以通過數(shù)據(jù)分析計算出起始模板量,這就是“熒光定量"中“定量"一詞的來源。

 

熒光定量PCR實驗需要用心對待,各種細(xì)小的偏差都會導(dǎo)致實驗出現(xiàn)結(jié)果不準(zhǔn)確或難以理解的現(xiàn)象。小事成就大事,細(xì)節(jié)成就。接下來小翌給大家來介紹一下熒光定量PCR中需要注意的小細(xì)節(jié)。

 

 

 
RNA保證可用
 
RNA的完整度在很大程度上影響著cDNA合成的長度與質(zhì)量。在進(jìn)行RNA提取、處理、儲存等實驗過程中需要采取特殊的保護(hù)措施,如操作者佩戴手套和口罩,全程使用無RNA酶污染的實驗耗材等;RNA存儲盡可能采用-80℃保存,且減少反復(fù)凍融。

RNA的完整性可通過Agilent 2100生物分析儀進(jìn)行分析,其在分析RNA完整性之后能夠給出準(zhǔn)確的數(shù)值(RIN值,全稱 RNA Intesity Number),該值在8-10之間表示RNA質(zhì)量非常好,小于7時表示RNA完整度較差。

 

 

但是在多數(shù)實驗室中,一般不會有Agilent 2100生物分析儀。在這種情況下,我們可以采用一種最快速的方式檢測RNA完整性---凝膠電泳。進(jìn)行RNA凝膠電泳時,需要保證全程無核酸酶干擾的風(fēng)險。電泳槽、配制瓶、制膠套件、電泳槽用DEPC水沖洗干凈,瓊脂糖和電泳液需要是新開封的,從而保證RNA在上樣及電泳過程中不會被核酸酶降解。電泳時需要合理選擇電壓和電泳時間,電壓過高或長時間電泳會產(chǎn)生大量熱量,從而導(dǎo)致RNA降解。

 

▲高質(zhì)量的RNA電泳會有三條比較明顯的條帶,分別是28S,18S與5S核糖體RNA條帶,并且28S與18S的條帶亮度之比大體為2:1。當(dāng)RNA出現(xiàn)降解時,條帶會呈現(xiàn)彌散狀。

 

 

 
前期準(zhǔn)備穩(wěn)妥
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
01

實驗儀器的準(zhǔn)備

常用的移液槍和進(jìn)行熒光定量PCR的qPCR儀器需要確認(rèn)定期有做過校正,通常校準(zhǔn)周期是一年,從而保證加樣的準(zhǔn)確性和檢測的準(zhǔn)確性。移液槍在使用之前用酒精擦拭槍桿并擦干放置一會兒,以減少污染的風(fēng)險。

 

02

 

內(nèi)參基因的準(zhǔn)備

 

為了使用實時熒光定量PCR對所選基因進(jìn)行準(zhǔn)確且可重現(xiàn)的表達(dá)分析,使用可靠的內(nèi)參基因在實驗之間標(biāo)準(zhǔn)化表達(dá)水平至關(guān)重要。GAPDH、β-actin和18S rRNA等是最為常見的內(nèi)參基因,但是無論選擇哪個基因作為內(nèi)源性對照,都必須對該基因進(jìn)行測試,以確保在所有所需的實驗條件下基因的一致表達(dá)。

 

  • GAPDH不適合選作內(nèi)參的情況

    GAPDH基因是糖酵解中的關(guān)鍵基因,在代謝過程中的表達(dá)很容易受到多種因素的影響。如在細(xì)胞的增殖過程中,細(xì)胞需要的能量ATP增多,糖酵解代謝加大,GAPDH基因的表達(dá)水平很有可能被上調(diào)。有報道稱,該基因可作為腫瘤發(fā)生的標(biāo)志物,在腫瘤組織與正常細(xì)胞及癌旁正常組織比較時,GAPDH表達(dá)并不一致。故在比較腫瘤組織與正常組織或細(xì)胞的某種基因或蛋白的表達(dá)時,GAPDH作為內(nèi)參應(yīng)慎重。

     

  • β-actin不適合選作內(nèi)參的情況

    對于actin蛋白由幾種異構(gòu)體組成,actin大致可以分為6種,不同actin之間具有較大的序列相似性(>90%)。在肌肉組織中β-actin分布很少,心肌中主要是alpha-cardiac muscle actin蛋白。故并不是所有的組織都適合選β-actin作為內(nèi)參。例如當(dāng)細(xì)胞向惡性轉(zhuǎn)化時,β-actin mRNA的表達(dá)水平增加;而假基因的存在也可干擾β-actin的檢測,此時并不適合選擇β-actin作為內(nèi)參。

     

  • 18S rRNA不適合選作內(nèi)參的情況

    rRNA的轉(zhuǎn)錄易受到各種生物因素和藥物的影響。在有絲分裂期間,28S、18S rRNA明顯減少或停止表達(dá)。此外存在很大爭議的是rRNA不包括poly(A)尾,在以oligo(dT)為引物的cDNA合成中不能被逆轉(zhuǎn)錄,建議在反轉(zhuǎn)錄的過程中除用oligo(dT)引物外,還要用18S作為反向引物,反轉(zhuǎn)錄后的cDNA最好用RNA酶處理一下,再高溫滅活。

     

▲確定用于人胰腺器官組織 RT-qPCR 分析的最佳內(nèi)參基因(Cherubini, Alessandro et al. PloS one. 2021)
 
如何選用合適的內(nèi)參?
 
  • 通過查詢研究相同或類似對象的文獻(xiàn),獲取相關(guān)的內(nèi)參信息并測試;
     
  • 查詢實時定量PCR內(nèi)參基因知識庫—ICG,獲取相關(guān)的內(nèi)參信息并測試;
     
  • 選擇實驗室已經(jīng)常用的內(nèi)參,進(jìn)行預(yù)實驗測試。

     

03
靶標(biāo)基因引物的準(zhǔn)備
進(jìn)行引物設(shè)計后,進(jìn)行預(yù)實驗驗證,選取擴(kuò)增效率在90%-110%(最佳95%-105%)之間,且熔解曲線為單峰的引物。

 

 

 
注重加樣細(xì)節(jié)
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
01

加樣環(huán)境需保證

熒光定量PCR實驗的靈敏度很高,在配制預(yù)混液的時候需在超潔凈平臺中進(jìn)行,以防止外源的污染。一些預(yù)混液在室溫下是穩(wěn)定的,但最佳做法是將試劑成分、酶和樣品保存在冰上。另外在進(jìn)行染料法(SYBR)熒光定量實驗時, 需要避免強(qiáng)光照射,強(qiáng)光照設(shè)會導(dǎo)致SYBR淬滅。

 

02

試劑準(zhǔn)備需注意

不要渦旋震蕩含酶的混合物,因為其對干擾高度敏感。僅輕輕旋轉(zhuǎn)或顛倒含酶的預(yù)混液即可。PCR引物和解凍的核酸可以通過輕輕且短暫的渦旋混合一到兩秒鐘。

 

03

加樣過程需謹(jǐn)慎

  • 加樣順序盡量選用先加大體積,后加小體積的方式;先加NTC,后加模板。加樣順序的把控可盡可能減少操作誤差和污染風(fēng)險。
     
  • 槍頭勤更換,以減少交叉污染的風(fēng)險。在重復(fù)組和樣品類型之間需在每次吸取后更換槍頭。在加樣過程中,不要讓槍頭穿過其他孔或不同的樣品/檢測類型。
     
  • 靈活使用移液槍,盡可能提升孔間重復(fù)和加樣精準(zhǔn)。針對10 μL及以下的小體積液體吸取,采用二檔吸取(按到底),一檔排出(不按到底)。當(dāng)孔中有液體時,小體積液體加樣,需選用低吸附槍頭伸入至液面以下進(jìn)行排出,減少液體殘留在槍頭內(nèi)的現(xiàn)象。

     

04

密封、混合需全面

  • 加樣至96孔板前后,切勿使用記號筆等在板的表面或者板底部寫字,這會干擾熒光激發(fā)和信號檢測。另外類似墨水等物質(zhì)可能會在qPCR儀器中從板上轉(zhuǎn)移至儀器模塊上,這類有色或熒光物質(zhì)污染模塊后會對當(dāng)前乃至后續(xù)的熒光定量PCR數(shù)據(jù)產(chǎn)生不利影響。用封板膜封板后,需檢查板的頂部以及驗證是否與板良好接觸,尤其是邊緣部分。
     
  • 在正式上機(jī)前需對反應(yīng)組分充分離心混合,若混合不均勻,精準(zhǔn)度和效率可能會受到影響。另外需檢查孔中是否存在氣泡或黏附在孔壁上,若存在,需輕輕敲擊管子底部后短暫離心,從而消除溶液中的氣泡。

 

 

 
全面程序檢查
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 
 


除了根據(jù)說明書仔細(xì)調(diào)整設(shè)置好反應(yīng)的溫度、時間和循環(huán)次數(shù)外,還需要注意以下事項:
  • 反應(yīng)體積是否填寫正確---需按照實際反應(yīng)體積來進(jìn)行填寫;
     
  • 延伸環(huán)節(jié)熒光采集開關(guān)是否打開---若熒光采集開關(guān)未打開,則會發(fā)生無擴(kuò)增曲線的現(xiàn)象;
     
  • 熔解曲線程序不同儀器各不相同,上圖中僅以Abi Q5為例,通常選用儀器默認(rèn)的信號采集程序即可。

 

以上是對熒光定量PCR實驗中細(xì)節(jié)注意的介紹,相信小伙伴們通過小翌的介紹,今后會針對這些細(xì)小問題已經(jīng)有一定的信心啦。關(guān)于如何做好qPCR實驗,小翌本次給大家展示的是最終章啦,從專場一到專場八,小翌針對熒光定量PCR實驗中可能出現(xiàn)的問題和困惑做了針對性介紹,希望能夠?qū)π』锇閭兊膶嶒炗兴鶐椭?。?dāng)然,還有很多知識,小翌還沒有介紹到,小伙伴們不要忘記自主學(xué)習(xí)哦!

 

 

 
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