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次氮基三乙酸-瓊脂糖

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產(chǎn)品型號(hào)

品       牌GEMIC

廠商性質(zhì)生產(chǎn)商

所  在  地上海市

更新時(shí)間:2024-10-13 19:19:14瀏覽次數(shù):1146次

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次氮基三乙酸-瓊脂糖
Co-NTANUPharoseFF是含次氮基三乙酸(NTA)基團(tuán)的金屬螯合填料,主要用于帶組-氨酸標(biāo)簽(His-tag)蛋白的親和層析。
與亞氨基二乙酸(IDA)配基相比,NTA配基的性能更加均衡,對(duì)螯合劑、還原劑、堿等試劑的耐受性更好,純化過程洗脫液中脫落的金屬離子少。

次氮基三乙酸-瓊脂糖

、產(chǎn)品介紹

 Co-NTANUPharoseFF是含次氮基三乙酸(NTA)基團(tuán)的金屬螯合填料,主要用于帶組-氨酸標(biāo)簽(His-tag)蛋白的親和層析。

與亞氨基二乙酸(IDA)配基相比,NTA配基的性能更加均衡,對(duì)螯合劑、還原劑、堿等試劑的耐受性更好,純化過程洗脫液中脫落的金屬離子少。

、產(chǎn)品特點(diǎn)與技術(shù)指標(biāo)

產(chǎn)品名稱

次氮基三乙酸-瓊脂糖

基質(zhì)

6%交聯(lián)瓊脂糖

配基

次氮基三乙酸,~17 μmol Co2+/ml

粒徑范圍 a

45~165 μm

平均粒徑

~90 μm

動(dòng)態(tài)結(jié)合載量 b

40 mg/mL 帶組-氨酸標(biāo)簽蛋白

推薦工作流速

60~300 cm/h

最大流速與壓力 c

1500 cm/h,≥0.5 MPa

pH 穩(wěn)定性

3~12(推薦的工作 pH),3~12(長(zhǎng)期穩(wěn)定);2~14(短期穩(wěn)定)d

化學(xué)穩(wěn)定性

在以下溶液中穩(wěn)定:常用的水相緩沖液、1 mM EDTA 、1 mol/L 氫氧化鈉、8 mol/L 尿素、6 mol/L 鹽酸胍、70%乙醇等。

儲(chǔ)存與運(yùn)輸

20%乙醇,2~30 ℃

注:a90%體積以上的微球在此粒徑范圍;bDBC10%測(cè)試條件為:10%流穿,大腸桿菌表達(dá) 帶組-氨酸標(biāo)簽的重組蛋白6 min 停留時(shí)間;c 10 cm 柱高下的最 大測(cè)試流速。d 剝離金屬離子后 CIP 過程的 pH 穩(wěn)定性。

、金屬螯合親和層析——NTA

金屬離子親和層析是基于蛋白質(zhì)分子表面的組-氨酸的咪唑基、半胱-氨酸的巰基和色-氨酸吲哚基能與Cu2+、Ni2+、Zn2+、Co2+Ca2+形成穩(wěn)定的配位結(jié)合而進(jìn)行生物大分子分離純化的過程。不同金屬離子對(duì)目標(biāo)蛋白的親和力與特異性不同,通常情況下,Cu2+、Ni2+Zn2+、Co2+的親和力依次降低(影響產(chǎn)率),特異性依次升高(影響純度),可根據(jù)分離需求選定合適的金屬離子。以下簡(jiǎn)要闡述Co-NTANUPharoseFF的親和原理(圖 1)。

NUPharose基球修飾上NTA配基后,該配體擁有四個(gè)配位基團(tuán),其中一個(gè)氮原子和三個(gè)氧原子可以與Co2+形成牢固的螯合物。Co2+可形成6配位數(shù)的八面體結(jié)構(gòu),剩余的兩個(gè)自由配位點(diǎn)可以與溶劑分子或蛋白質(zhì)分子結(jié)合。Co2+與組-氨酸標(biāo)簽蛋白的兩個(gè)組-氨酸殘基的咪唑基團(tuán)配位結(jié)合的過程即為金屬螯合填料與目標(biāo)蛋白的特異性結(jié)合過程。提高緩沖液中咪唑的濃度可以將目標(biāo)蛋白洗脫,洗脫過程中咪唑和目標(biāo)蛋白競(jìng)爭(zhēng)與Co2+的結(jié)合。降低pH會(huì)影響金屬離子與配體的結(jié)合,因此改變pH也是金屬螯合層析洗脫過程的方式之一,但pH不宜低于4,pH過低會(huì)將剝離金屬離子。

金屬離子親和層析過程的非特異性吸附可能會(huì)來自離子相互作用、金屬離子與含組-氨酸、半胱-氨酸、色-氨酸蛋白之間的相互作用。前者通過提高緩沖液的離子強(qiáng)度得到抑制,通常添加500mMNaCl;后者可在上樣緩沖液中添加少量的咪唑(例如~5mM)或者在沖洗過程中添加咪唑而除去。經(jīng)過優(yōu)化,可以得到樣品純度和收率均較高的結(jié)果。

Co-NTANUPharoseFF填料在使用過程中Co2+掉落量少,可連續(xù)使用多次。當(dāng)填料性能明顯下降后可以用EDTA將原金屬離子剝離,重新螯合鎳后再生使用。

次氮基三乙酸-瓊脂糖

、使用方法參

4.1  色譜柱裝填

以下闡述與層析系統(tǒng)連接時(shí),填料的色譜柱裝填方法。

(1)所有需要用到的材料的溫度要與色譜操作的溫度一樣,液體最好做脫氣處理。

(2)填料用量計(jì)算:通過沉降定量填料體積,需要的沉降填料體積=柱體積×壓縮比(也稱壓縮因子)。沉降體積是指填料在20%乙醇保存液中自然沉降完-全讀取的穩(wěn)定體積。Co-NTANUPharoseFF的壓縮比為1.15。為使達(dá)到壓縮比,可通過柱頭下壓的方法,也可以通過高流速壓柱。

3)填料清洗:將填料懸液充分搖勻后量取相應(yīng)體積,抽去液體,并用約3倍填料體積的純化水洗滌,重復(fù)3次,以除去保存液。

4)裝柱填料懸液準(zhǔn)備:將填料轉(zhuǎn)移到適當(dāng)?shù)娜萜髦校尤脒m量的裝柱液,制成50~75 v%的裝柱填料懸液(原包裝中填料體積分?jǐn)?shù)為67%),使用前攪勻。

5)裝填前準(zhǔn)備:在清洗干凈的層析柱下端加入裝柱液,以除去下墊片及層析柱下端的空氣,在柱內(nèi)保留少量的蒸餾水,擰緊下堵頭,調(diào)整柱子使其垂直于地面。

6)裝填:將攪勻后的填料懸液一次性緩慢倒入層析柱內(nèi)(必要時(shí)使用裝柱器),為避免引入氣泡,應(yīng)使之沿層析柱內(nèi)壁自然流下。將所有填料加入后,用裝柱液將裝柱 器加滿,擰緊裝柱器上蓋,將柱子與層析系統(tǒng)連接。

7)壓柱:使柱內(nèi)填料自然沉降(或50~150 cm/h的低流速下沉降),待填料沉降完-全后(填料與液體的界面清晰),去除裝柱器,裝上上柱頭,并將柱頭下降至界面處;通過高流速(推薦流速見下表,注意柱壓不超過0.3MPa),繼續(xù)壓柱至界面清晰穩(wěn)定,標(biāo)記界面穩(wěn)定時(shí)的柱高。停泵,打開柱頭上的閥門/堵頭,關(guān)閉柱底的閥門/堵頭,下壓柱頭至標(biāo)記位置下方與壓縮比對(duì)應(yīng)的位置,旋緊柱頭,裝柱完成。裝柱完成后,需用高流速平衡柱內(nèi)的填料。

次氮基三乙酸-瓊脂糖 

4.2  柱效測(cè)定和評(píng)價(jià)

完成裝柱后、使用前可通過柱效測(cè)定和評(píng)價(jià)可以確認(rèn)層析柱裝填質(zhì)量。柱效通常用 理論塔板高度(HETP)和非對(duì)稱因子(As)來評(píng)價(jià)。

 

4.3  螯合金屬離子

Co-NTANUPharoseFF 以預(yù)螯合金屬離子的形式出售,在必要時(shí)可將金屬離子剝離(參照4.7小節(jié)),重新螯合Co2+過程參照以下步驟。

1)配制50 mMCoCl2溶液。

2)用純水清洗色譜柱,純水用量3~5CV(柱體積),流速100~300 cm/h

3)用3~5CV的金屬離子溶液通過色譜柱,流速50~100cm/h ,螯合完-全后色譜柱底部的顏色從白色變?yōu)?/span>Co2+的粉紅色。

4)用純水清洗色譜柱除去過量的金屬離子,純水用量至少5CV,流速100~300cm/h。

5)用0.3MNaCl溶液將螯合不穩(wěn)定的金屬離子除去,緩沖液用量至少3 CV,流速100~300 cm/h。

6)可直接用結(jié)合緩沖液平衡色譜柱。

在裝柱前螯合金屬離子的過程與上述在色譜柱中螯合一致,可在旋勻儀、反應(yīng)瓶(釜)中螯合金屬離子,1 CVCoCl2溶液即可,利用過濾器清洗螯合前后的填料。

 

4.4  平衡與上樣(Equilibration & Loading

金屬螯合填料與磷酸鹽、Tris-HCl等緩沖體系兼容,其中20mM PB+150~500 mM NaClpH=7.4)的體系最為常用。初始的緩沖液稱為平衡緩沖液,記為緩沖液A。緩沖液A通常不含咪唑(對(duì)于Ni-NTA NUPharose FF,可在樣品中添加5~40mM咪唑,這是兩種填料的區(qū)別),pH在7~8之間居多,呈弱堿性。

在上樣前,需用緩沖液A在操作流速下平衡層析柱,該過程通常需要5~10個(gè)柱體積的緩沖液A,以電導(dǎo)、pH等檢測(cè)信號(hào)參數(shù)不變且與緩沖液A對(duì)應(yīng)為準(zhǔn)。

上樣量可按“mg目標(biāo)蛋白/mL填料"來設(shè)定,通常為DBC10%50~80%,例如Co-NTANUPharoseFF產(chǎn)品對(duì)重組金黃色-葡萄球菌蛋白Ar-SPA,NRPA04)的DBC10%~40mg/mL,純化r-SPA 時(shí)的上樣量可為20~32mg/mL。除了DBC10%,也可以測(cè)試上樣流穿液中的目標(biāo)蛋白確定上樣量。

上樣后需要3~10 個(gè)柱體積的緩沖液A再平衡層析柱。

 

4.5  洗雜(Wash

在緩沖液A中添加5mM的咪唑沖洗層析柱,可以將非特異性結(jié)合的雜蛋白除去。咪唑濃度越高,雜蛋白被除去得越徹-底,但會(huì)降低目標(biāo)蛋白的收率。洗雜過程咪唑的濃度與不同蛋白的特性相關(guān),對(duì)于Co-NTANUPharose FF,通常5 mM的濃度可以將雜蛋白除去。洗雜的體積通常為3~10個(gè)柱體積。

 

4.6  洗脫(Elution

最-常用的洗脫方式為提高洗脫液中咪唑的濃度(在緩沖液A中加入咪唑),推薦在0~200 mM范圍內(nèi)進(jìn)行階躍洗脫或者線性梯度洗脫。對(duì)于大多數(shù)帶組-氨酸標(biāo)簽的蛋白,200mM的咪唑濃度可以將目標(biāo)蛋白洗脫完-全。對(duì)于一些場(chǎng)合,也可以改變pH,需注意pH不能低于4。

 

4.7  再生(Regeneration

在多次使用后,通常是2~7次,需要對(duì)填料進(jìn)行再生,純化同一種蛋白可更多次,試具體情況而定??梢赃x擇0.5~1柱體積200mM EDTA+500 mM NaCl pH=7)的緩沖液將金屬離子剝離。金屬離子的重新螯合參照4.3小節(jié)。

 

4.8  在位清洗(CIP

通常上述的再生過程可將填料徹-底清洗。若發(fā)生柱壓升高,或?yàn)榱吮苊饨徊嫖廴荆瑢⒔饘匐x子剝離后可進(jìn)行在位清洗過程??刹捎靡韵氯軇┻M(jìn)行在位清洗:2mol/L NaCl 1mol/L NaOH、70%乙醇或 30%異丙醇等。在位清洗可有效去除介質(zhì)上的雜質(zhì),反向效果更佳。清洗后需用3~5 柱體積的純水除去上述溶劑。

4.9 填料保存

填料的初始保存液為20%乙醇,使用過后可繼續(xù)用20%乙醇保存。保存溫度在2~30 ℃為宜,不可凍存。



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