色譜載體的類型（整體柱、樹脂、膜等）、固相載體介質(zhì)和使用的流動相，都會影響到分離成功與否。選擇正確的工具和條件組合會帶來想要的結(jié)果。然而，還有其他因素，如柱溫、流動相制備的準(zhǔn)確性以及最重要的柱平衡，這些因素對于最佳分離至關(guān)重要，但很容易被忽視，尤其是最后一個因素。

PrimaS和QA介質(zhì)采用梯度洗脫（分別為電導(dǎo)率和pH值）方式來分離空衣殼和實(shí)衣殼。由于這種分離是基于兩者之間微小的衣殼差異，因此會對色譜參數(shù)的微小變化很敏感。尤其是如果整個過程由多人操作時，其中一些參數(shù)可能不明顯且分析后難以確定。為了建立認(rèn)知，本文使用PrimaS介質(zhì)作為模型評估了其中的幾個因素。此外，本文還說明了為什么使用電導(dǎo)率和 pH檢測器對于理解樣品結(jié)果之間的不一致性非常重要。

這些結(jié)果也可考慮應(yīng)用于QA介質(zhì)及其他介質(zhì)，然而結(jié)果會有一定程度的變化。

▼

實(shí)驗(yàn)方法

使用0.2 mL PrimaS^TM整體柱進(jìn)行方法開發(fā)，用AAV 2/8血清型樣本進(jìn)行檢測。為了評估色譜參數(shù)，從色譜圖中獲取空衣殼和實(shí)衣殼的保留時間和洗脫pH值向樣品中加入色氨酸，將其作為一種非結(jié)合示蹤劑（流穿峰）。

PATfix® HPLC系統(tǒng)用于色譜實(shí)驗(yàn)

檢測器：

• pH和電導(dǎo)率

• 熒光（Ex/Em：280/348 nm）

緩沖液組成（pH梯度）：

• 緩沖液A：10 mM BTP、10 mM（TRIS）、2 mM氯化鎂（MgCl₂）、1%山梨醇、0.1% poloxamer188，pH 8.00

• 緩沖液B：10 mM BTP、10 mM（TRIS）、10 mM氯化鈉（NaCl）、2 mM 氯化鎂（MgCl₂）、1%山梨醇、0.1% poloxamer188，pH 9.50

梯度：從100%緩沖液A到100%緩沖液B，5.0分鐘梯度。

CIP和柱平衡：10 CV 0.1 M（NaOH）和1 M氯化鈉（NaCl）；30 CV 0.1 M乙酸和1 M氯化鈉，pH 5；20 CV雙蒸水（ddH2O）；20 CV緩沖液A；20 CV緩沖液B；40 CV緩沖液A

結(jié)果
 

溫度變化對空衣殼（E）/ 實(shí)衣殼（F）分離的影響:

 圖1: 在23℃、26℃和30℃三種不同溫度下進(jìn)行的AAV空衣殼/實(shí)衣殼分離的色譜圖

溫度升高會顯著提高空衣殼和實(shí)衣殼之間的分辨率，但也會影響保留時間（圖 1）。雖然潛在的機(jī)制很多，但較高的溫度確實(shí)會增加分子動能，進(jìn)而影響分子-分子和分子-整體柱相互作用。

為了成功應(yīng)用，需了解AAV結(jié)合特性（電導(dǎo)率、pH、T）并保持溫度穩(wěn)定。使用柱溫箱對于提供可重現(xiàn)的色譜柱性能至關(guān)重要。然而我們在使用制備柱時確實(shí)需要注意這一點(diǎn)，它對于可重現(xiàn)性分析至關(guān)重要。

如果要將緩沖液置于恒溫箱中，則可對其進(jìn)行預(yù)熱，或可以在進(jìn)入色譜柱之前使用金屬線圈進(jìn)行預(yù)熱。有些緩沖液比其他緩沖液更值得注意，因?yàn)樗鼈兊膒H值容易受溫度影響（如TRIS）。其他應(yīng)用場景也是如此，如pDNA同種型分離非常依賴溫度。

還必須控制柱溫。最重要的是，冷藏過的色譜柱，應(yīng)該將它預(yù)熱到工作條件。

使用PrimaS柱時效果可觀，但在使用CIMac AAV full/empty（QA基質(zhì)）柱時也觀察到效果顯著。

緩沖液制備影響空衣殼/實(shí)衣殼分離:

 圖2: 使用pH 8.00±0.05的緩沖液A進(jìn)行AAV空衣殼/實(shí)衣殼分離的色譜圖

緩沖液制備對分離性能有影響（圖 2）。 pH 和電導(dǎo)率都是色譜方法優(yōu)化的關(guān)鍵因素，因此應(yīng)該嚴(yán)格控制?，F(xiàn)有例子顯示了 pH 值變化對分辨率和保留時間的影響。在某些情況下，影響可能比圖 2 中觀察到的更大。

雖然如圖所示分析了 pH 值的影響，但電導(dǎo)率也非常重要。滴定過程中 pH 值被過度校正（pH 值降到目標(biāo)值以下必須重新調(diào)高）時要注意。這會增加離子濃度，因此盡管達(dá)到了正確的 pH 值，但仍增加了電導(dǎo)率。在這種情況下，丟棄緩沖液并重新開始配制新緩沖液可減少阻礙。這適用于使用 PrimaS、QA 和其他基質(zhì)整體柱時。

要了解并控制 pH 值及電導(dǎo)率對色譜分離的影響，使用 pH 計(jì)尤其是電導(dǎo)率檢測器至關(guān)重要。缺乏此類知識會使我們變得盲目，并在分析不可重現(xiàn)性或其他異?，F(xiàn)象背后原因時很難提供指導(dǎo)。

對于 PrimaS，pH 值的精度必須達(dá)到 1%，才能獲得可重現(xiàn)的結(jié)果。這可通過使用精確質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)化 的1 M HCl 調(diào)節(jié) pH 值來實(shí)現(xiàn)。

柱平衡對空衣殼/實(shí)衣殼分離的影響

 圖3: 不同柱平衡條件下進(jìn)行AAV空衣殼/實(shí)衣殼分離的色譜圖

在使用制備型色譜或分析型色譜時，為了獲得可重現(xiàn)的結(jié)果和更大化峰分辨率而采取的較簡單預(yù)防措施，也是往往被忽視的一種：色譜柱平衡。 很容易觀察到并再次顯示在圖3 中，如果色譜柱未完全平衡，峰之間的分辨率會顯著降低。無論是離子交換(QA)色譜柱還是混合模式色譜柱，如 PrimaS（離子交換與氫鍵結(jié)合），為了適當(dāng)?shù)臉悠方Y(jié)合來準(zhǔn)備色譜柱是不可少的。

在進(jìn)行分析時，電導(dǎo)率和pH檢測器將幫助我們確認(rèn)色譜柱是否已平衡。最好標(biāo)志是與空白樣品相比，電導(dǎo)率和 pH 信號接近基線。柱平衡后的推薦步驟是在注入樣品之前上至少 3 個空白樣品（或直到所有信號軌跡在運(yùn)行之間可重現(xiàn)）。

對于制備型色譜，這主要取決于柱出口處的 pH 和電導(dǎo)率信號是否與柱前測量值相匹配。

開始開發(fā)使用色譜柱時嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行。在此過程的后期，可以根據(jù)經(jīng)驗(yàn)優(yōu)化柱平衡條件（減少特定緩沖液的 CV，或例如在平衡期間過渡到靜態(tài)保持步驟——沒有流速以節(jié)省緩沖液）。

值得注意的是需要在原位清洗（CIP）后中和色譜柱，尤其是在使用不同濃度的 NaOH 時。使用 1 M 乙酸鈉或選擇等同強(qiáng)度緩沖液（如在方法本身中使用的緩沖液）。繼續(xù)用去離子水洗滌。之后，將平衡緩沖液用于新的色譜運(yùn)行或用于作為長期儲存的儲存溶液。此步驟對于獲得最佳柱效至關(guān)重要。如需精確的分步指導(dǎo)，請搜索隨附的說明手冊。

系統(tǒng)空隙體積的影響

 圖4: 空衣殼/實(shí)衣殼AAV分離色譜圖：基于檢測器dt(pH-FLD)的延遲

空隙體積在解釋和評價色譜參數(shù)時起著重要作用，特別是在高空隙體積系統(tǒng)上運(yùn)行小色譜柱時，空隙體積的影響會更加顯著。圖 4顯示了pH及熒光檢測器的延遲——分析物首先通過pH檢測器，再通過熒光檢測器。如果采用檢測器dt(pH-FLD)校正，則可獲得更準(zhǔn)確的結(jié)果。

必須考慮方法進(jìn)程指示信號（例如電導(dǎo)率和 pH 值）與 UV、熒光或 MALS 信號之間的色譜系統(tǒng)配置延遲。

結(jié)論

為了在CIMac PrimaS™和CIMac AAV full/empty色譜柱上進(jìn)行可重現(xiàn)性的AAV空衣殼/實(shí)衣殼分離，重要的是：

· 控制色譜柱、流動相和樣品溫度。對于色譜柱和流動相，請使用恒溫箱。或在色譜柱前使用金屬線圈在流動相流到色譜柱時對其進(jìn)行加熱（這只會加熱緩沖液，對色譜柱本身作用不大）。進(jìn)樣前恒溫樣品。

· 準(zhǔn)備緩沖液時要注意精度。設(shè)置可接受的誤差以減少不受控制的波動。

· 平衡色譜柱。好的起點(diǎn)是遵循應(yīng)用手冊并根據(jù)經(jīng)驗(yàn)進(jìn)行優(yōu)化。

· 考慮色譜配置條件并考慮在信號上觀察到的任何延遲。

一直以來，BIA Separations是質(zhì)粒DNA、AAV、mRNA高效率純化。不僅提供整體柱及平臺方法，還提供定制的純化服務(wù)，以滿足質(zhì)粒DNA、AAV、mRNA規(guī)模化生產(chǎn)的純化需求。