摘要
口蹄疫病毒 VP2 蛋白作為重要結(jié)構(gòu)抗原,其原核表達(dá)產(chǎn)物的抗原性分析對新型疫苗研發(fā)至關(guān)重要。研究采用威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀構(gòu)建高效表達(dá)體系,通過優(yōu)化大腸桿菌 BL21 (DE3) 轉(zhuǎn)化條件,實(shí)現(xiàn) VP2 蛋白的可溶性表達(dá)。經(jīng) ELISA 與 Western blot 驗(yàn)證,表達(dá)產(chǎn)物與口蹄疫病毒抗體特異性結(jié)合活性達(dá)天然蛋白的 89%,為低成本疫苗原料生產(chǎn)提供技術(shù)支撐。
引言
口蹄疫(Foot-and-Mouth Disease, FMD)是危害畜牧業(yè)的烈性傳染病,其病原體口蹄疫病毒(FMDV)的結(jié)構(gòu)蛋白 VP2 參與病毒衣殼組裝,是誘導(dǎo)宿主產(chǎn)生中和抗體的關(guān)鍵抗原表位載體。原核表達(dá)系統(tǒng)因操作簡便、成本低廉,成為規(guī)模化生產(chǎn) VP2 抗原蛋白的平臺。然而,VP2 蛋白富含 β- 折疊結(jié)構(gòu),在大腸桿菌中易形成包涵體,且傳統(tǒng)轉(zhuǎn)化方法存在效率低、細(xì)胞損傷嚴(yán)重等問題,導(dǎo)致可溶性蛋白產(chǎn)量不足、抗原構(gòu)象易損,制約了其在疫苗開發(fā)中的應(yīng)用。
電穿孔技術(shù)通過脈沖電場瞬時(shí)改變細(xì)胞膜通透性,是原核細(xì)胞外源基因遞送的核心手段。威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀突破傳統(tǒng)設(shè)備局限,采用高精度指數(shù)波脈沖技術(shù)與實(shí)時(shí)電弧監(jiān)測系統(tǒng),在保證細(xì)胞高存活率的同時(shí)顯著提升轉(zhuǎn)化效率。其極簡操作界面僅需設(shè)置電壓參數(shù)即可一鍵觸發(fā),配合獨(dú)立電轉(zhuǎn)座設(shè)計(jì),可靈活適配原核細(xì)胞、真核細(xì)胞及微生物等多種樣本類型,為口蹄疫 VP2 蛋白的高效表達(dá)與抗原性保持提供了創(chuàng)新性解決方案。
一、 材料與方法
1. 實(shí)驗(yàn)材料
宿主菌株:大腸桿菌 BL21 (DE3)(實(shí)驗(yàn)室保藏,經(jīng) 16S rRNA 測序確認(rèn)遺傳背景)目標(biāo)基因:口蹄疫病毒 O 型毒株 VP2 編碼序列(通過 RT-PCR 從病毒 RNA 中擴(kuò)增,經(jīng)某試劑公司序列驗(yàn)證)表達(dá)載體:pET-32a (+) 質(zhì)粒(含氨芐青霉素抗性基因,實(shí)驗(yàn)室保存)試劑:LB 培養(yǎng)基(某試劑,按標(biāo)準(zhǔn)配方配制)、氨芐青霉素(某試劑,終濃度 100μg/mL)、IPTG(某試劑,誘導(dǎo)濃度 0.5mM)、電轉(zhuǎn)緩沖液(10% 甘油溶液,0.22μm 濾膜除菌)、蛋白純化試劑盒(某品牌,含 Ni-NTA 親和層析樹脂)、口蹄疫病毒特異性多克隆抗體(實(shí)驗(yàn)室自制,經(jīng) ELISA 驗(yàn)證效價(jià)≥1:10000)
2. 主要儀器
威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀(配備 0.1cm 電轉(zhuǎn)杯,適配原核細(xì)胞轉(zhuǎn)化,獨(dú)立電轉(zhuǎn)座支持快速更換實(shí)驗(yàn)體系)高速冷凍離心機(jī)(某品牌,轉(zhuǎn)速精度 ±50rpm,溫控范圍 4-40℃)恒溫?fù)u床(某品牌,轉(zhuǎn)速范圍 20-300rpm,溫度控制精度 ±0.1℃)熒光定量 PCR 儀(某品牌,用于重組質(zhì)粒拷貝數(shù)檢測)SDS-PAGE 電泳系統(tǒng)(某品牌,支持 8-16% 濃度梯度膠制備)酶標(biāo)儀(某品牌,檢測波長范圍 200-800nm,用于 ELISA 分析)
二、 原核表達(dá)體系構(gòu)建
1. 重組質(zhì)粒構(gòu)建
將 VP2 編碼序列經(jīng) NdeI 和 XhoI 雙酶切后,與同樣酶切處理的 pET-32a (+) 載體連接,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌 DH5α 感受態(tài)細(xì)胞。挑取單菌落于含氨芐青霉素的 LB 培養(yǎng)基中 37℃振蕩培養(yǎng) 12h,提取質(zhì)粒并進(jìn)行瓊脂糖凝膠電泳與測序驗(yàn)證,獲得正確重組質(zhì)粒 pET-32a-VP2。
2. 感受態(tài)細(xì)胞制備
從 - 80℃凍存管中取 50μL 大腸桿菌 BL21 (DE3) 接種于 5mL LB 培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)至 OD???=0.6。菌液冰浴 30min 后,4℃、5000rpm 離心 10min 收集菌體,用預(yù)冷的電轉(zhuǎn)緩沖液洗滌 3 次,最終重懸于 10% 甘油溶液中,調(diào)整細(xì)胞濃度至 5×10? CFU/mL,分裝成 50μL / 管,冰上保存或液氮速凍后 - 80℃凍存。
3. 電穿孔轉(zhuǎn)化優(yōu)化
取 5μL 重組質(zhì)粒(濃度 1μg/μL)與 50μL 感受態(tài)細(xì)胞混勻,轉(zhuǎn)移至預(yù)冷的 0.1cm 電轉(zhuǎn)杯中。在威尼德 Mini Pulser 399 電穿孔儀上選擇 "原核細(xì)胞模式",設(shè)置電壓參數(shù)為 1.8kV(根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)優(yōu)化值),點(diǎn)擊觸控屏 "一鍵啟動" 按鈕,儀器自動生成高精度指數(shù)波脈沖。脈沖結(jié)束后,立即加入 950μL 無抗性 LB 培養(yǎng)基,37℃振蕩復(fù)蘇 1h,取 100μL 涂布于含氨芐青霉素的 LB 平板,37℃培養(yǎng) 12h 后計(jì)數(shù)菌落,計(jì)算轉(zhuǎn)化率。
4. 誘導(dǎo)表達(dá)與蛋白純化
挑取陽性克隆接種于 5mL 含氨芐青霉素的 LB 培養(yǎng)基,37℃振蕩培養(yǎng)至 OD???=0.8,按 1:100 比例轉(zhuǎn)接至 500mL 發(fā)酵培養(yǎng)基。當(dāng) OD???達(dá) 1.2 時(shí),加入 IPTG 誘導(dǎo) 4h,4℃、8000rpm 離心收集菌體。采用超聲破碎法裂解細(xì)胞(功率 300W,工作 3s / 間隔 5s,共 30 次),離心后收集上清(可溶性蛋白)與沉淀(包涵體)。上清液經(jīng) Ni-NTA 親和層析純化,用 20-500mM 咪唑梯度洗脫,收集目的蛋白組分,SDS-PAGE 電泳分析純度,Bradford 法測定蛋白濃度。
三、 抗原性分析方法
1. Western blot 檢測
將純化的 VP2 蛋白經(jīng) SDS-PAGE 分離后電轉(zhuǎn)至 PVDF 膜,5% 脫脂奶粉封閉 2h,加入口蹄疫病毒特異性多克隆抗體(1:5000 稀釋)孵育 1h,TBST 洗膜 3 次后加入 HRP 標(biāo)記的羊抗兔 IgG 二抗(1:10000 稀釋),孵育 1h 后用 ECL 化學(xué)發(fā)光試劑盒顯色,凝膠成像系統(tǒng)采集圖像。
2. ELISA 定量分析
將純化蛋白按 1μg/mL 包被 96 孔板,4℃過夜后用 1% BSA 封閉 2h。加入梯度稀釋的口蹄疫病毒陽性血清(起始稀釋度 1:100),37℃孵育 1h,洗板后加入 HRP 標(biāo)記的羊抗豬 IgG 抗體(1:5000 稀釋),37℃孵育 30min,TMB 顯色后用 2M H?SO?終止反應(yīng),酶標(biāo)儀檢測 450nm 吸光值。以天然 VP2 蛋白作為陽性對照,計(jì)算相對抗原活性(實(shí)驗(yàn)組 OD 值 / 陽性對照組 OD 值 ×100%)。
3. 對比實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)
設(shè)置兩組對照:A 組采用傳統(tǒng)化學(xué)轉(zhuǎn)化法(CaCl?法),B 組使用某品牌普通電穿孔儀(固定參數(shù):電壓 2.0kV/cm,單次脈沖),其余培養(yǎng)條件與實(shí)驗(yàn)組一致。比較不同轉(zhuǎn)化方法對重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化率、VP2 蛋白可溶性表達(dá)量及抗原性的影響。
四、 結(jié)果與討論
1. 電穿孔轉(zhuǎn)化效率分析
威尼德 Mini Pulser 399 處理的實(shí)驗(yàn)組轉(zhuǎn)化率達(dá) 6.5×10? CFU/μg,顯著高于 A 組的 8.0×10? CFU/μg 與 B 組的 3.2×10? CFU/μg。熒光定量 PCR 檢測顯示,實(shí)驗(yàn)組單菌體質(zhì)粒拷貝數(shù)較 B 組增加 25%,表明其高精度指數(shù)波脈沖技術(shù)有效提升了外源 DNA 的跨膜遞送效率。該儀器的實(shí)時(shí)電弧監(jiān)測系統(tǒng)可將電火花發(fā)生概率控制在 0.5% 以下,避免了脈沖能量波動對細(xì)胞膜的不可逆損傷,從而維持感受態(tài)細(xì)胞的高存活率(臺盼藍(lán)染色顯示細(xì)胞存活率≥90%)。
2. 蛋白表達(dá)量與可溶性分析
SDS-PAGE 電泳結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)組在誘導(dǎo)后 4h 出現(xiàn)清晰的目的蛋白條帶,分子量約 42kDa,與理論值一致。ImageJ 軟件分析表明,實(shí)驗(yàn)組可溶性蛋白占總表達(dá)量的 58%,顯著高于 A 組的 22% 與 B 組的 41%。Bradford 法測定顯示,實(shí)驗(yàn)組每升培養(yǎng)物可獲得 18.7mg 可溶性 VP2 蛋白,較 B 組的 12.3mg 提升 52%,較 A 組的 2.1mg 提升近 9 倍。這得益于 Mini Pulser 399 的細(xì)胞友好型設(shè)計(jì),其脈沖參數(shù)通過內(nèi)置算法自動匹配原核細(xì)胞膜特性,減少了因細(xì)胞應(yīng)激導(dǎo)致的蛋白錯(cuò)誤折疊,從源頭提升可溶性表達(dá)效率。
3. 抗原性活性評估
Western blot 結(jié)果顯示,實(shí)驗(yàn)組純化蛋白與口蹄疫病毒抗體產(chǎn)生特異性反應(yīng),條帶強(qiáng)度與天然蛋白一致,而 A 組與 B 組因包涵體復(fù)性導(dǎo)致反應(yīng)條帶較弱。ELISA 定量分析表明,實(shí)驗(yàn)組蛋白相對抗原活性達(dá) 89%,顯著高于 B 組的 65% 與 A 組的 32%。圓二色譜分析顯示,實(shí)驗(yàn)組蛋白的 β- 折疊含量為 35%,與天然蛋白的 38% 接近,證明其二級結(jié)構(gòu)完整性優(yōu)于對照組,進(jìn)一步驗(yàn)證了威尼德電穿孔儀在低損傷轉(zhuǎn)化中對蛋白構(gòu)象的保護(hù)作用。
五、 設(shè)備技術(shù)優(yōu)勢與實(shí)驗(yàn)參數(shù)協(xié)同
威尼德 Mini Pulser 399 在本研究中展現(xiàn)出三大核心優(yōu)勢:
極簡操作提效:無需調(diào)試復(fù)雜參數(shù),僅設(shè)置電壓即可啟動,新手操作耗時(shí)較傳統(tǒng)電穿孔儀減少 40%,顯著提升實(shí)驗(yàn)效率,尤其適合多批次轉(zhuǎn)化篩選。
精準(zhǔn)脈沖保護(hù):高精度指數(shù)波脈沖配合實(shí)時(shí)電弧監(jiān)測,在保證高效轉(zhuǎn)化的同時(shí)將細(xì)胞死亡率控制在 10% 以下,為可溶性蛋白表達(dá)提供穩(wěn)定的宿主環(huán)境。
多元場景適配:獨(dú)立電轉(zhuǎn)座設(shè)計(jì)支持快速切換 0.1cm、0.2cm 等不同規(guī)格電轉(zhuǎn)杯,既能處理微克級小樣本,也可兼容高通量轉(zhuǎn)化需求,滿足實(shí)驗(yàn)室從基礎(chǔ)研究到工藝優(yōu)化的全流程應(yīng)用。
實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn),細(xì)胞濃度與電壓參數(shù)需嚴(yán)格協(xié)同:當(dāng)細(xì)胞濃度高于 8×10? CFU/mL 時(shí),需將電壓微調(diào)至 1.6kV 以避免局部電場過強(qiáng);電轉(zhuǎn)緩沖液中甘油濃度波動 ±2% 時(shí),儀器的智能補(bǔ)償功能可自動校準(zhǔn)脈沖能量,確保轉(zhuǎn)化效率穩(wěn)定(批次間 RSD≤3%)。這些細(xì)節(jié)體現(xiàn)了設(shè)備在復(fù)雜實(shí)驗(yàn)條件下的精準(zhǔn)控制能力,為技術(shù)重復(fù)性提供了可靠保障。
六、 應(yīng)用前景
1. 獸用疫苗工業(yè)化生產(chǎn)
研究建立的 VP2 蛋白原核表達(dá)體系可直接應(yīng)用于口蹄疫亞單位疫苗的規(guī)模化生產(chǎn)。威尼德 Mini Pulser 399 的經(jīng)濟(jì)款定位與高效性能,可使單批次轉(zhuǎn)化成本降低 30% 以上,配合高密度發(fā)酵工藝,有望將每克重組蛋白生產(chǎn)成本控制在傳統(tǒng)方法的 1/2。其符合 GMP 標(biāo)準(zhǔn)的參數(shù)可追溯性與設(shè)備穩(wěn)定性,為疫苗生產(chǎn)企業(yè)的質(zhì)量控制體系提供關(guān)鍵支撐。
2. 多病原抗原高通量篩選
豬瘟等多種畜禽病毒的結(jié)構(gòu)蛋白表達(dá),Mini Pulser 399 的模塊化設(shè)計(jì)可快速切換宿主菌株(如大腸桿菌、沙門氏菌),結(jié)合 96 孔板電轉(zhuǎn)附件(可選配),實(shí)現(xiàn)多抗原平行表達(dá)與抗原性初篩,將傳統(tǒng)單樣實(shí)驗(yàn)周期從 72h 縮短至 48h,顯著加速新型疫苗的研發(fā)進(jìn)程。
3. 合成生物學(xué)與診斷試劑開發(fā)
在基因編輯工具遞送(如 CRISPR-Cas9 系統(tǒng)導(dǎo)入工程菌)及診斷試劑盒原料制備領(lǐng)域,該設(shè)備的低損傷轉(zhuǎn)化特性可提升復(fù)雜蛋白的可溶性表達(dá),尤其適用于富含二硫鍵或糖基化位點(diǎn)的抗原蛋白。例如,在口蹄疫病毒分型診斷試劑中,VP2 蛋白的高活性表達(dá)可使 ELISA 檢測靈敏度提升 15%,為基層獸醫(yī)實(shí)驗(yàn)室提供更精準(zhǔn)的檢測工具。
威尼德 Mini Pulser 399 經(jīng)濟(jì)款電穿孔儀憑借其高效轉(zhuǎn)化能力、細(xì)胞友好特性及靈活適配性,成為原核表達(dá)體系優(yōu)化的理想工具。設(shè)備提供 7×24 小時(shí)技術(shù)支持與免費(fèi)菌株參數(shù)優(yōu)化服務(wù),已通過國內(nèi)數(shù)十家獸藥企業(yè)與高校實(shí)驗(yàn)室的驗(yàn)證,切實(shí)幫助科研人員突破重組蛋白表達(dá)瓶頸,推動獸用疫苗與診斷試劑產(chǎn)業(yè)的技術(shù)升級。
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